ŚRODEK PRZECIWDROBNOUSTROJOWY TRICLOSAN   - DZIAŁANIE, ZASTOSOWANIE I ZAGROŻENIA

Magda Izydorczak; Joanna Stefańska

doi:10.56782/pps.57

Data publikacji : 2007-08-20

Tom 5 Nr 2 (2007)

ŚRODEK PRZECIWDROBNOUSTROJOWY TRICLOSAN - DZIAŁANIE, ZASTOSOWANIE I ZAGROŻENIA

Magda Izydorczak

Joanna Stefańska

DOI: https://doi.org/10.56782/pps.57

Abstrakt

Triclosan jest syntetycznym związkiem o szerokim spektrum działania przeciwdrobnoustrojowego. Jest środkiem z wyboru w higienie szpitalnej, wchodzi w skład mydeł, dezodorantów, kremów antybakteryjnych, past do zębów, płynów do płukania jamy ustnej i innych kosmetyków. Najnowsze badania pokazują, że nadużycie triclosanu (i innych substancji przeciwdrobnoustrojowych) może wpływać na wzrost oporności bakterii na antybiotyki.

Słowa kluczowe:

triclosan, związki przeciwdrobnoustrojowe, oporność bakterii

Inne teksty tego samego autora

Joanna Stefańska, OPORNOŚĆ GRONKOWCÓW ZŁOCISTYCH NA ŚRODKI PRZECIWBAKTERYJNE , Prospects in Pharmaceutical Sciences: Tom 1 Nr 3 (2003)
Joanna Stefańska, Adam Huczyński, BIOLOGICZNE WŁAŚCIWOŚCI MONENZYNY A , Prospects in Pharmaceutical Sciences: Tom 6 Nr 2 (2008)

Podobne artykuły

Joanna Stefańska, OPORNOŚĆ GRONKOWCÓW ZŁOCISTYCH NA ŚRODKI PRZECIWBAKTERYJNE , Prospects in Pharmaceutical Sciences: Tom 1 Nr 3 (2003)
Falah Saleh Mohammed, Eylem Kına, İmran Uysal, Mustafa Sevindik, Total phenolic, flavonoid contents, antioxidant and antimicrobial activities of Hesperis pendula , Prospects in Pharmaceutical Sciences: Tom 21 Nr 2 (2023)
Nazan Çömlekçioğlu, Nuh Korkmaz, Mehmet Ali Yüzbaşıoğlu, İmran Uysal, Mustafa Sevindik, Mistletoe (Loranthus europaeus Jacq.): antioxidant, antimicrobial and anticholinesterase activities , Prospects in Pharmaceutical Sciences: Tom 22 Nr 3 (2024)
Celal Bal, Emre Cem Eraslan, Mustafa Sevindik, Antioxidant, antimicrobial activities, total phenolic and element contents of wild edible mushroom Bovista nigrescens , Prospects in Pharmaceutical Sciences: Tom 21 Nr 2 (2023)
Elżbieta Hejchman, Dominik Lewandowski, KOMPLEKSY MIEDZI(II) ZASAD SCHIFFA - NOWE ZWIĄZKI O AKTYWNOŚCI PRZECIWDROBNOUSTROJOWEJ , Prospects in Pharmaceutical Sciences: Tom 15 Nr 9 (2017)
Barbara Krassowska-Świebocka, Piotr Rudzki, METODY OTRZYMYWANIA SOLI DIARYLOJODONIOWYCH I JODYLOARENÓW ORAZ ICH ZASTOSOWANIE W SYNTEZIE ORGANICZNEJ , Prospects in Pharmaceutical Sciences: Tom 2 Nr 1 (2004)
Nuh Kormaz, Falah Saleh Mohammed, Imran Uysal, Mustafa Sevindik, Antioxidant, antimicrobial and anticholinesterase activity of Dittrichia graveolens , Prospects in Pharmaceutical Sciences: Tom 21 Nr 4 (2023)
Falah Saleh Mohammed, Imran Uysal, Hasan Hüseyin Yaz, Mustafa Sevindik, Papaver species: usage areas, essential oil, nutrient and elements contents, biological activities , Prospects in Pharmaceutical Sciences: Tom 21 Nr 4 (2023)
Falah Saleh Mohammed, Imran Uysal, Mustafa Sevindik, Functional food Momordica charantia: biological activities , Prospects in Pharmaceutical Sciences: Tom 21 Nr 3 (2023)
Anna Zgadzaj, FOTOGENOTOKSYCZNOŚĆ W BADANIACH IN VITRO ORAZ TESTACH BAKTERYJNYCH W LATACH 2013-2018 W PORÓWNANIU DO LAT WCZEŚNIEJSZYCH W ŚWIETLE ZMIAN PRZEPISÓW PRAWNYCH , Prospects in Pharmaceutical Sciences: Tom 16 Nr 3 (2018)

1 2 3 4 5 6 7 > >>

Możesz również Rozpocznij zaawansowane wyszukiwanie podobieństw dla tego artykułu.

Szczegóły

Bibliografia

Statystyki

Autorzy

Pobierz pliki

PDF

Zasady cytowania

Izydorczak, M., & Stefańska, J. (2007). ŚRODEK PRZECIWDROBNOUSTROJOWY TRICLOSAN - DZIAŁANIE, ZASTOSOWANIE I ZAGROŻENIA. Prospects in Pharmaceutical Sciences, 5(2), 13–17. https://doi.org/10.56782/pps.57

Wskaźniki altmetryczne

Cited by / Share

Licencja

Utwór dostępny jest na licencji Creative Commons Uznanie autorstwa 4.0 Międzynarodowe.

Bibliografia

Adolfsson-Erici M., Petterson M., Parkkonen J., Sturve J. Triclosan, a commonly used bactericide found in human milk and in the aquatic environment in Sweden. Chemosphere, 2002, 46: 1485-1489 DOI: https://doi.org/10.1016/S0045-6535(01)00255-7

Bhargava H.N., Leonard P. A. Triclosan: applications and safety. Am. J. Infect Control.1996, 24: 209-218 DOI: https://doi.org/10.1016/S0196-6553(96)90017-6

Chuanchuen, R., Beinlich K., Hoang T. T., Becher A., Karkhoff-Schweizer R. R., Schweitzer H. P. Cross-resistance between triclosan and antibiotics in Pseudomonas aeruginosa is mediated by multidrug efflux pumps: exposure of a susceptible mutant strain to triclosan selects nfxB mutants overexpressing MexCD-OprJ. Antimicrob. Agents Chemother. 2001, 45: 428-432 DOI: https://doi.org/10.1128/AAC.45.2.428-432.2001

Ciba speciality Chemicals. Value beyond chemistry. /www.cibasc.com/

Citizen Petition to the U. S. Food and Drug Administration (FDA) to Ban Triclosan. (2005)

Davies J. Inactivation of antibiotics and dissemination of resistance genes. Science 1994, 264: 375-382 DOI: https://doi.org/10.1126/science.8153624

Durbize E., Vigan M., Puzenat E. Spectrum of cross-photosensitization in 18 consecutive patients with contact photoallergy to ketoprofen: associated photoalergies to non-benzophenone-containing microbes. Contact Dermatitis, 2003, 48: 144-149 DOI: https://doi.org/10.1034/j.1600-0536.2003.00066.x

Fan F., Yan K., Wallis N. G., Reed S., Moore T. D., Rittenhouse S. F., DeWolf W. E. Jr., Huang J., McDevitt D., Miller W. H., Seefeld M. A., Newlander K. A., Jakas D. R., Head M. S., Payne D. J. Defining and combating the mechanisms of triclosan resistance in clinical isolates of Staphylococcus aureus. Antimicrob. Agents Chemother. 2002, 46: 3343-3347 DOI: https://doi.org/10.1128/AAC.46.11.3343-3347.2002

FDA. Glossary of Pesticide Chemicals. June 2005

Heath R. J., Li J., Roland G. E., Rock C. O. Inhibition of the Staphylococcus aureus NADPH-dependent enoyl-acyl carrier protein reductase by triclosan and hexachlorophene. J. Biol. Chem. 2000, 275: 4654-4659 DOI: https://doi.org/10.1074/jbc.275.7.4654

Hoang T. T., Schweizer H. P. Characterization of Pseudomonas aeruginosa enoyl-acyl carrier protein reductase (FabI): a target for the antimicrobial triclosan and its role in acylated homoserine lactone synthesis. J. Bacteriol. 1999, 181: 5489-5497 DOI: https://doi.org/10.1128/JB.181.17.5489-5497.1999

Jones R. D., Jampani H. B, Newman J. L., Lee A. S. Triclosan: a review of effectiveness and safety in Heath care settings. Am. J. Infect. Control. 2000, 28: 184-196 DOI: https://doi.org/10.1067/mic.2000.102378

Latch D. E., Packer J. L., Stender B. L., VanOverbeke J., Arnold W. A., McNeil K. Aqueous photochemistry of triclosan: formation of 2,4-dichlorophenol, 2,8-dichlorodibenzo-p-dioxin and oligomerization products. Environ. Toxicol. Chem. 2005, 24: 517-525. DOI: https://doi.org/10.1897/04-243R.1

Levy C. W., Roujeinikovai A., Sedelnikova S., Baker P. J., Stuitje A. R., Slabas A. R., Rice D., Rafferty J. B. Molecular basis of triclosan activity. Nature, 1999, 398: 383-384 DOI: https://doi.org/10.1038/18803

McMurry L. M., McDermott P. F., Levy S. B. Genetic evidence that InhA of Mycobacterium smegmatis is a target for triclosan. Antimicrob. Agents Chemother.1999, 43: 711-713 DOI: https://doi.org/10.1128/AAC.43.3.711

McMurry L. M., Oethinger M., Levy S. B. Triclosan targets lipid synthesis. Nature, 1998, 394: 531-532 DOI: https://doi.org/10.1038/28970

McMurry L. M., Oethinger M., Levy S. B. Overexpression of marA, soxS, or acrAB produces resistance to triclosan in laboratory and clinical strains of Escherichia coli. FEMS Microbiol. Lett. 1998, 166: 305-309 DOI: https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.1998.tb13905.x

Meade M. J., Waddell R. J., Callahan T. M. Soil bacteria Pseudomonas putida and Alcaligenes xylosoxidans subsp. denitificans inactivate triclosan in liquid and solid substrates. FEMS Microbiol. Lett. 2001, 204: 45-48 DOI: https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2001.tb10860.x

Miller T. L., Larusso D. J., Walsh M. L,. Deinzer M. L. The acute toxicity of penta-hexa-, and heptachlorohydroxydiphenyl ethers in mice. J. Toxicol. Environ. Heath. 1983, 12: 245-253 DOI: https://doi.org/10.1080/15287398309530423

Perozzo R., Kuo M., Sidhu A. S, Valiyaveettil J. T., Bittman R., Jacobs. W.R. Jr. Fidock D. A, Sacchettini J.C. Structural elucidation of the specificity of the antibacterial agent triclosan for malarial enoyl-acyl carrier protein reductase. J. Biol. Chem. 2002, 277: 13106-13114 DOI: https://doi.org/10.1074/jbc.M112000200

Qiu X., Janson Ch. A, Court R. J., Smyth M. G., Payne D. J., Abel-Meguid S.S. Molecular basis for triclosan activity involves a flipping loop in the active site. Protein Science, 1999, 8: 2529-2532 DOI: https://doi.org/10.1110/ps.8.11.2529

Randall L. P., Ridley A. M., Cooles S. W., Sharma M., Sayers A. R., Pumbwe L., Newell D. G., Piddock L. J., Woodward M.J. Prevalence of multiple antiboitic resistance in 443 Campylobacter spp. isolated from humans and animals. J. Antimicrob. Chemother. 2003, 52: 507-510 DOI: https://doi.org/10.1093/jac/dkg379

Randall L. P., Cooles S. W., Piddock L. J., Woodward M. J. Effect of triclosan or a phenolic farm disinfectant on the selection of antibiotic-resistant Salmonella enterica. J. Antimicrob. Chemother. 2004, 54:621-627. DOI: https://doi.org/10.1093/jac/dkh376

Russell A. D. Whither triclosan? J. Antimicrob. Chemother. 2004, 53: 693-695 DOI: https://doi.org/10.1093/jac/dkh171

Sanchez P., Moreno E., Martinez J. L The biocie triclosan selects Stenotrophomonas maltophilia mutants that overproduce the SmeDEF multidrug efflux pump. Antimicrob. Agents Chemother. 2005, 49: 781-782 DOI: https://doi.org/10.1128/AAC.49.2.781-782.2005

Schmid M.B., Kaplan N. Reduced triclosan susceptibility in methicillin-resistance Staphylococcus epidermidis. Antimicrob. Agents Chemother. 2004, 48: 1397-1399 DOI: https://doi.org/10.1128/AAC.48.4.1397-1399.2004

Suller M. T. E., Russell A. D. Triclosan and antibiotic resistance in Staphylococcus aureus. J. Antimicrob. Chemother. 2000, 46: 11-18 DOI: https://doi.org/10.1093/jac/46.1.11

Wammer K. H., Lapara T. M., McNeil K., Arnold W. A., Swackhamer D. L. Changes in antibacterial activity of triclosan and sulfa drugs due to photochemical transformations. Environ. Toxicol. Chem. 2006, 25: 1480-1486 DOI: https://doi.org/10.1897/05-384R.1

Wilson B. A., Orvos D. R., Versteeg D. J., Inauen J., Capdevielle M. Aquatic toxicity of triclosan. Environ. Toxicol. Chem. 2002, 21: 1338-1349 DOI: https://doi.org/10.1002/etc.5620210703

Yazdankhah, S. P., Scheie A. A., Hoiby E. A., Lunestad B. T, Heir E., Fotland T. O., Naterstad K., Kruse H. Triclosan and antimicrobial resistance in bacteria: an overview. Microb. Drug Resist. 2006,12: 83-90 DOI: https://doi.org/10.1089/mdr.2006.12.83

Magda Izydorczak

Afiliacja:

Studenckie Koło Naukowe przy Zakładzie Mikrobiologii Farmaceutycznej Poland

Joanna Stefańska

Afiliacja:

Zakład Mikrobiologii Farmaceutycznej Wydział Farmaceutyczny Akademii Medycznej w Warszawie Poland